В экспериментах изучали морфологию семенников на 60 беспородных половозрелых белых крысах-самцах после общего однократного γ-облучения (1,0 Гр), в разные сроки (3-, 10-, 90-е сутки). Морфологические исследования выявили элементы деструкции канальцевого аппарата семенников (3–10-е сутки после облучения) и признаки последующего восстановления их структуры (90-е сутки). Сделан вывод, что признаки восстановления структуры и функции семенников регистрируются лишь через 3 мес после однократного γ-облучения. При этом исчезают признаки отека стромы семенников, происходит частичное восстановление поврежденного радиацией сперматогенного эпителия.

1. Аль Меселмани М. А, Шабанов П. Д. Морфофункциональное состояние семенников в условиях радиационного воздействия. // Экологический Вестник. – 2014. – Т. 27, № 1. – С. 45–50.

2. Конопля Е. Ф., Федосенко О. Л. Отдаленные эффекты внешнего облучения репродуктивной системы половозрелых крыс-самцов // Проблемы здоровья и экологии. – 2008. – № 18. – С. 117–119.

3. Котовский Е. Ф, Шатманов С. Т. К вопросу о влиянии витамина А на семенники // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. – 1985. – Т. 99. – № 5. – С. 626–628.

4. Мамина В. П., Жигальский О. Сравнительный анализ действия ионизирующего излучения и ксенобиотиков на сперматогенный эпителий и выход доминантных летальных мутаций у лабораторных животных // Медицина труда и промышленная экология. – 2014. – № 11. – С. 26–29.

5. Мамина В. П., Шейко Л. А. Оценка функционального состояния семенников и яичников у крыс, подвергнутых действию шестивалентного хрома в малых дозах // Проблемы репродукции. – 2017. – №. – С. 25–28.

6. Семенов, Н. В. Патоморфологическая картина семенников мышей при введении некоторых противоопухолевых антибиотиков и ее сравнительная оценка / Антибиотики. – 1984. – Т. 29. – № 9. – С. 666–671.

7. Троян Э. И. Воздействие инкорпорированных радионуклидов на становление морфофункциональных свойств семенников потомства белых крыс: автореф. дис. … к.б.н.: 14.00.23 / Э. И. Троян. – М., 2000. – 20 с.

8. Grafstro M. G. Rat testis as a radiobiological in vivo model for radio nuclides // Radiation Protection Dosimetry. – 2006. – Vol. 118, N 1. – P. 32–42.

9. Hanafi, N. Low Doses of Gamma Radiation may Impair Testicular Tissue in a Rat Treated CCl4 Model: Role of BM Transplantation // J. Biological Sciences. – 2012. – Vol. 12, № 3. – P. 128–137.

10. Kangasniemi, M, Huhtaniemi I, Meistrich M. Failure of spermatogenesis to recover despite the presence of a spermatogonia in the irradiated LBNF1 rat // Biol. of Reprod. – 1996. – Vol. 54, № 6. – P. 1200–1208.

11. Lambrot R. High radio sensitivity of germ cells in human male fetus // J. Clin. Endocrinol. Metab. – 2007. – Vol. 92, №7. – P. 2632–2639.

12. Liu G. Apoptotic сell death induced by low-dose radiation in male germ cells: hormesis and adaptation // Сritical Rev. in Toxicology. – 2007. – Vol. 37, N 7. – P. 587–605.

13. Monesi, V. Relation between x-ray sensitivity and stages of the cell cycle in spermatogonia of the mouse // Radiation Research. – 1962. – Vol. 17, № 6. – P. 809–838.

14. Moreno S. G., Dutrillaux B., Coffigny H. High sensitivity of rat foetal germ cells to low dose-rate irradiation // Intern. J. of Radiation Biol. – 2001. – Vol. 77, N 4. – P. 529–538.

15. Vergouwen R. Radio sensitivity of testicular cells in the fetal mouse.// Radiation Research. – 1995. – Vol. 141, № 1. – P. 66–73.

16. Wanga B. Effects of prenatal irradiation with accelerated heavy–ion beams on postnatal development in rats: III. Testicular development and breeding activity // Advances in Space Research. – 2007. – Vol. 4 0, N 4. – P. 550–562.